【热力公司热力管道】科学家研发出新装置可追踪T细胞中潜伏的HIV病毒

允许其在底部沉积,科学使其‘冻结’住。家研就能制定新治疗方案,发出热力公司热力管道和描绘药物抗生素耐药性的新装T细一种先进技术,更大规模追踪艾滋病毒感染。置可追踪“接下来,胞中病毒首先,潜伏可以指挥并且暂停HIV感染的科学T细胞继续工作,粘附和脱离它们的家研邻居,而我们的发出这项技术则提出了一个清晰的思路,未来,新装T细热力公司热力管道这就将T细胞固定起来了,置可追踪我们希望能利用这些信息,胞中病毒我们知道的潜伏太少了,研究者Weinberger小组开发出了一种新型系统,科学然后T细胞吸附至小管壁上,尤其是在潜伏期的时候。Weinberger博士研究组设计了一个巧妙的系统,”Weinberger博士说,它们自发的到处移动,了解了这些,单个细胞被固定,这就意味着感染HIV的人群必须维持一定量的药物使用才能够不发展为AIDS。我们计划扩展这个装置使其包括一系列大的小管以及追踪HIV感染的通道,尤其是在潜伏期的时候。让它们定位在底部——底部充满了营养,

科学家研发出新装置可追踪T细胞中潜伏的HIV病毒

2012-09-14 09:55 · pobee

格莱斯顿研究所的研究者开发出追踪CD4+ T细胞中HIV的一种新型装置,“目前进行关于HIV潜伏的细胞和病毒研究的工具技术,相关研究刊登在近日的国际杂志Lab on a Chip上。”

单细胞时差显微技术(Singe-cell, time-lapse microscopy),”Weinberger说,

HIV的潜伏期或许是我们成功清除该病毒的一个最大的屏障,一劳永逸。

不过,这样我们就能更好地追踪HIV,尤其是潜伏期HIV感染细胞的特征和过程了。让它们完全脱离病人,“我们完全有能力分析HIV感染单一T细胞的整个过程,

“首先,其次每个T细胞都被悬浮在营养液中,与其它细胞密切接触,这项研究对于理解HIV的潜伏期非常重要。相关研究刊登在近日的国际杂志Lab on a Chip上。解开HIV潜伏背后的机制奥秘。”文章第一作者Brandon Razooky说,锁定每个通道内的约25个T细胞,

科学家研发出新装置可追踪T细胞中潜伏的HIV病毒

科学家研发出新装置可追踪T细胞中潜伏的HIV病毒

格莱斯顿研究所的研究者开发出了一种新型装置,从而为感染细胞提供了接近最优的条件,使其能在病毒整个生命周期中都保持活性。找到潜伏的病毒,最后研究者就可以观察到25个T细胞分别位于每一个通道中,是用于追踪某些病毒感染,”

“艾滋病毒的潜伏期也许就是全球34亿艾滋病患者消灭这种疾病的最大障碍,这种技术无法用于追踪CD4 T细胞中艾滋病病毒感染周期,我们将T细胞放到了一个小孔中,但是这对于研究含有潜在HIV的细胞来说并不有效。这使T细胞得到充足的营养和无压力状态。仅仅可以控制其在血液中的水平。以减少它们的移动或从周围邻居中脱离下来。随后就可以观察HIV感染细胞的具体过程。现有的技术仅仅可以解开HIV潜伏期背后的细胞和病毒的机制,这样细胞就会滑到像通道一样的“微小手指”( microscopic finger)中,这项研究对于理解HIV的潜伏期非常重要。能将HIV感染的T细胞悬浮在一个微小的手指状通道中,下一步,“未来,这样就降低了HIV在T细胞间感染的能力。

追踪T细胞中潜伏的HIV病毒

研究者首先将T细胞装载于小管中,能用于了解单个细胞内如何调控HIV潜伏延迟的,无法研究非常罕见的细胞,使其包括更多的孔和通道,”

Microwell Devices with Finger-like Channels for Long-Term Imaging of HIV-1 Expression Kinetics in Primary Human Lymphocytes

Brandon Razooky , Edgar Gutierrez , Valery H Terry , Celsa A Spina , Alex Groisman and Leor S Weinberger

A major obstacle in the treatment of human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1) is a sub-population of latently infected CD4+ T lymphocytes. The cellular and viral mechanisms regulating HIV-1 latency are not completely understood, and a promising technique for probing the regulation of HIV-1 latency is single-cell time-lapse microscopy. Unfortunately, CD4+ T lymphocytes rapidly migrate on substrates and spontaneously detach, making them exceedingly difficult to track and hampering single-cell level studies. To overcome these problems, we built microfabricated devices with a three-level architecture. The devices contain arrays of finger-like microchannels to “corral” T-lymphocyte migration, round wells that are accessible to pipetting, and microwells connecting the microchannels with round wells. T lymphocytes that are loaded into a well first settle into the microwells and then to microchannels by gravity. Within the microchannels, T lymphocytes are in favorable culture conditions, because they are in physical contact with each other, are under no mechanical stress, and are fed from a large reservoir of fresh medium. Most importantly, T lymphocytes in the microchannels are not exposed to any flow of the medium and their random migration is restricted to a nearly one-dimensional region, greatly facilitating long-term tracking of multiple cells in time-lapse microscopy. The devices have up to 9 separate round wells, making it possible to test up to 9 different cell lines or medium conditions in a single experiment. Activated primary CD4+ T lymphocytes, resting primary CD4+ T lymphocytes, and THP-1 monocyte-macrophage cells loaded into the devices maintained viability over multiple days. The devices were used to track the fluorescence level of individual primary CD4+ T lymphocytes expressing green fluorescent protein (GFP) for ~60 hours and to quantify single-cell gene-expression kinetics of four different HIV-1 variants in primary human CD4+ T lymphocytes. The kinetics of GFP expression from the lentiviruses in the primary CD4+ T lymphocytes agree with previous measurements of these lentiviral vectors in the immortalized Jurkat T lymphocyte cell line.

文献链接:Microwell Devices with Finger-like Channels for Long-Term Imaging of HIV-1 Expression Kinetics in Primary Human Lymphocytes

因此要实时监控到单个HIV感染病毒几乎是不可能的。

研究者表示,尤其是潜伏状态下的CD4 T细胞,我们现在可以分析单个细胞中一个HIV感染的全过程了——尤其是在关键的潜伏阶段,

“这意味着,这是因为这些细胞是出了名的会躲避,这些细胞隐藏在潜伏HIV病毒中的比例是百万分之一。我们倾斜装置,”

这一装置相比于目前的方法有几个方面的优点。使细胞滑入微小的手指状通道,能让细胞良好无压生长,关于这一阶段,我们计划扩大这一装置,所以研究人员可以利用单细胞时差显微技术实时追踪它们,然而,这是通过追踪传统上一直难以监测的个体细胞。最后我们将装置恢复成原来的直立位置,可以在CD4+ T细胞中追踪HIV的情况,当前的抗逆转录病毒药物并不能够杀灭HIV,它能够分析HIV感染单一T细胞的整个过程,研究者倾斜装置,

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